Ядерна фізика та енергетика Nuclear Physics and Atomic Energy   ISSN: 1818-331X (Print), 2074-0565 (Online)   Publisher: Institute for Nuclear Research of the National Academy of Sciences of Ukraine   Languages: Ukrainian, English   Periodicity: 4 times per year   Open access peer reviewed journal

Full text (ua)

N. V. Tordiya, D. M. Grodzinsky

Institute of Cell Biology and Genetic Engineering of the National Academy of Sciences of Ukraine, Kyiv, Ukraine

Abstract: The hypothesis for explanation of the time oscillations of plant cells' cytoplasm moving speed caused by both ionizing radiation and electromagnetic emission of high frequency is suggested. These oscillations are connected with the permeability of the membrane for Са²⁺ ions. Experiment with using of potentially dependent calcium blocker Verapamil allowed to conform this hypothesis.

1. Камия Н. Движение протоплазмы (Москва: Изд-во иностр. лит., 1962) 306 с.

2. Kamiya N. Physical and Chemical Basis of Cytoplasmic Streaming. Ann. Rev. Plant. Biology 32 (1981) 205. https://doi.org/10.1146/annurev.pp.32.060181.001225

3. Смирнова Н. Н., Сиренко Л. А. Цитофизиологический метод экспресс-оценки токсичности природных вод. Гидробиол. журнал 29 (1993) 9.

4. Tordiya N., Grodzinsky D., Danilchenko O. The influence of ionizing irradiation for cytoplasm movement in the Elodea canadensis cells. Abstracts of the 29th Meeting of the European Society for Radiation Biology (Capri, Italy, 1998) p. 120.

5. Тордія Н. В., Гродзінський Д. М., Ситнік С. В. Вплив електромагнітного випромінювання низької інтенсивності в діапазоні надвисоких частот на рух цитоплазми диференційованих рослинних клітин. Фізика живого 7 (1999) 43.

6. White P. J. Calcium channels in higher plants. Biochim. Biophys. Acta 1465 (2000) 171. https://doi.org/10.1016/S0005-2736(00)00137-1

7. Білявська Н. О. Роль іонів кальцію в механізмі гравірецепції у рослин та в ефектах мікрогравітації на клітинному рівні: Автореф. дис. ... докт. біол. наук (Київ, 1998) 32 с.

8. Дячок Ю. В. Роль Са²⁺ як вторинного месенджера в індукції захисних реакцій в культурі клітин Allium сера L.: Автореф. дис. ... канд. біол. наук (Київ, 1995) 23 с.

9. Kadota A., Wada M. Photoinduction of circular F-actin on chloroplast in a fern protonemal cell. Protoplasma 151 (1989) 171. https://doi.org/10.1007/BF01403456

10. Древаль В. И. Влияние ионизирующего излучения и Са²⁺ на структуру биологических мембран. Радиобиология 33 (1993) 31.

11. Шевченко А. С., Габай В. Л., Шевченко Т. С., Алексахин Р. М. Нарушение проницаемости плазматических мембран для ионов Са²⁺ при радиационно-индуцированном апоптозе тимоцитов. Докл. РАН 353 (1997) 284.

12. Мусієнко М. М. Фізіологія рослин. Підручник (Київ: Фітосоціоцентр, 2001) 392 с.

13. Брайон О. В., Чикаленко В. Г., Славний П. С. Фізіологія рослин. Практикум (Київ: Вища шк., 1995) 192 с.

14. Erdreich A., Rahamimoff H. The possible involvement of the phospholipid phase of membranes in mediating the effects of verapamil on Ca²⁺ transport. Biochem. Pharm. 36 (1987) 1175. https://doi.org/10.1016/0006-2952(87)90237-1

15. Marme D. The role of calcium and calmodulin in signal transduction. Second Messengers in Plant Growth and Development. Ed. W. D. Boss, D. J. Morre, A. R. Liss (New York, 1989) p. 57.

16. Bush D. S. Calcium Regulation in Plant Cells and its Role in Signaling. Ann. Rev. Plant Biology 46 (1995) 95. https://doi.org/10.1146/annurev.pp.46.060195.000523

17. Trewavas A. J., Malho R. Signal Perception and Transduction: The Origin of the Phenotype. Plant Cell 9 (1997) 1181. https://doi.org/10.1105/tpc.9.7.1181

18. Клюшников В. Ю., Асташкин Е. И. Кальциевый канал управления внутриклеточными процессами как возможная мишень в механизмах сверхчувствительности биологических систем к внешним слабым воздействиям. Тр. ІІІ Междунар. симпоз. "Механизмы действия сверхмалых доз" (Москва, 2002) Т. 3, c. 228.

19. Yokota E., Hibara K., Imamichi N. et al. Possible involvement of protein phosphorylation in the regulation of cytoplasmic organization and streaming in root hair cells as revealed by a protein phosphatase inhibitor, calyculin A. Protoplasma 211 (2000) 245. https://doi.org/10.1007/BF01279897

20. Vacquier V. The isolation of intact cortical granules from sea urchin eggs: Calcium ions trigger granule discharge. Develop. Biol. 43 (1975) 62. https://doi.org/10.1016/0012-1606(75)90131-1

21. Shimmen T., Yokota E. Physiological and Biochemical Aspects of Cytoplasmic Streaming. Int. Rev. Cytol. 155 (1994) 97. https://doi.org/10.1016/S0074-7696(08)62097-5

22. Hayama T., Tazawa M. Ca²⁺ reversibly inhibits active rotation of chloroplasts in isolated cytoplasmic droplets of Chara. Protoplasma 102 (1980) 1. https://doi.org/10.1007/BF01276943

23. Вlume Y. В., Smertenko A., Ostapets N. N., Viklicky V. Post-translation modifications of plant tubulin. Cell Biol. Intern. 21 (1997) 917.

24. Эйдус Л. Х. Является ли апоптоз "программируемой гибелью клеток". Радиац. биология. Радиоэкология 37 (1997) 527.

25. Заварзин А. А., Хазарова А. Д. Основы общей цитологии. Учеб. пособие (Изд-во Ленингр. ун-та, 1982) 240 с.