 |
Ядерна фізика та енергетика
ISSN:
1818-331X (Print), 2074-0565 (Online) |
| Home page | About |
Full text (ru) Role of endophytic fungi in the migration of the radionuclides in the vascular plants of the Ukrainian Polesye sphagniopratum
N. N. Zhdanova1, E. V. Sokolova1, I. N. Kurchenko1, A. A. Orlov2
1Institute of Microbiology and Virology named after D. K. Zabolotny, National Academy of Sciences of Ukraine, Kyiv, Ukraine
2Polissya branch of the Ukrainian Research Institute of Forestry and Forest Melioration, Zhytomyr, Ukraine
Abstract: It is known that the specific activity of 137Cs in vegetative phytomass of cranberry and sphagnum in oligotrophic conditions of Ukrainian Polessye forest sphagniopratum amounts 5000 - 10000 Bq/kg of air-dry weight. Roots of cranberry in natural conditions never run up to peat and mainly are located in top layer of the sphagnum top which is sodden by a water, but specific activity of the radionuclide in swamp water is low (2 – 10 Bq/l). It was supposed that mycorrhizal and endophytic micromycetes take an essential part in transferring the mineral substances and 137Cs from sphagnum mosses to ericoid plants under oligotrophic swamp conditions. Endophytic fungi from vascular plants were not investigated in Ukraine. The article is devoted to the estimation of distribution of endophytic fungi in plants which are dominants of the plant cover of sphagniopratum. 47 species of micromycetes which belong to 27 genera were identified. For moss and ericoid plants five mutual species of endophytic fungi were detected.
References:1. Билай В. И. Фузарии (Київ: Наук. думка, 1977) 442 с.
2. Билай В. И., Коваль Э. З. Аспергиллы (Київ: Наук. думка, 1988) 204 с.
3. Великанов Л. Л., Сидорова И. И. Некоторые биохимические аспекты в экологии грибов. Успехи микробиологии 18 (1983) 112.
4. Великанов Л. Л., Сидорова И. И. Экологические проблемы защиты растений от болезней. Итоги науки и техники. Защита растений 6 (1988) 43.
5. Елланська І. О., Соколова О. В., Курченко І. М. Мікобіота Panax ginseng C. A. Меу при введенні його в культуру. Укр. ботан. журн. 52 (1995) 671.
6. Жданова Н. Н., Василевская А. И., Гаврилюк В. И. и др. Накопления радиоактивного стронция некоторыми почвенными микромицетами в модельных опытах. Микол. и фитопатол. 24 (1990) 106.
7. Кравец А. П., Гродзинский Д. М., Павленко Ю. А. и др. Статистический критерий гетерогенности загрязнения при исследовании биотических факторов миграции радионуклидов. Радиационная биология. Радиоэкология 33 (1993) 489.
8. Лашко Т. Н., Лашко А. П., Василевская А. И. и др. Влияние почвенных микромицетов на накопление 137Cs растениями сахарной свеклы и клевера. Збірник наукових праць Інституту ядерних досліджень 1 (2000) 154. https://jnpae.kinr.kyiv.ua/01.1/Articles_PDF/jnpae-2000-01-1-154.pdf
9. Лопатин В. Д. О наиболее существенных экологических особенностях болот. Экология 6 (1997) 419.
10. Марчюленене Д. П. Радиохемоэкологическое исследование гидрофитов пресных водоемов Литвы. Радиобиология 27 (1987) 813.
11. Орлов О. О. Роль сфагнового покриву у перерозподілі потоків калію та 137Cs в екосистемах мезооліготрофних боліт. Укр. ботан. журн. 57 (2000) 715.
12. Орлов О. О., Ірклієнко С. П. Основні закономірності міграції 137Cs та розподілу його валового запасу в екосистемах лісових сфагнових боліт Полісся України. Наук. вісник Націон. аграрного ун-ту. Вип. Лісівництво (Київ, 1999) c. 60.
13. Пидопличко Н. М. Пенициллии (Ключи для определения видов) (Київ: Наук. думка, 1972) 150 с.
14. Пидопличко Н. М., Милько А. А. Атлас мукоральных грибов (Київ: Наук. думка, 1971) 115 с.
15. Потаевич Е. В., Кузнецов О. Л. Эколого-физиологические особенности болотных растений. Эколого-биологические особенности и продуктивность растений болот (Петрозаводск, 1982) c. 163.
16. Потаевич Е. В., Кучко Л. А. О некоторых физиологических показателях приспособленности растений к условиям болот. Эколого-физиологические механизмы устойчивости растений к действию экстремальных температур (Петрозаводск, 1978) c. 155.
17. Романов В. В. Гидрофизика болот (Гидрометеоиздат, 1961) 360 с.
18. Сидоренко А. П., Заякина Г. В., Соколова Е. В., Созинов А. А. Использование полимеразной цепной реакции для детекции загрязнения зерна кукурузы грибом Fusarium moniliforme Sheldon var. lactis. Цитология и генетика 35 (2001) 34.
19. Солоневич Н. Г. Материалы к эколого-биологической характеристике болотных трав и кустарничков. Растительность Крайнего Севера (Наука, Ленингр. отд., 1956) Т. 2, c. 307.
20. Солоневич Н. Г. Эколого-биологическая характеристика растений. Экология и биология растений Восточноевропейской лесотундры. Часть 1 (Наука, Ленингр. отд., 1970) c. 145.
21. Booth C. The Genus Fusarium (Commonwealth Mycol. Inst.: Kew, England, 1971) 237 р.
22. Cabral D., Stone J. K., Carroll G. C. The internal mycobiota of Juncus spp.: microscopic and cultural observation of infection patterns. Mycol. Res. 97 (1993) 367. https://doi.org/10.1016/S0953-7562(09)81140-4
23. Carroll G. Fungal Endophytes in Stems and Leaves: From Latent Pathogen to Mutualistic Symbiont. Ecology 69 (1988) 2. https://doi.org/10.2307/1943154
24. Clark C. L., Miller J. D., Whitney N. J. Toxicity of conifer needle endophytes to spruce budworm. Mycol. Res. 93 (1989) 508. https://doi.org/10.1016/S0953-7562(89)80044-9
25. Clay K. Clavicipitaceous fungal endophytes of grasses: Their potential as biocontrol agents. Mycol. Res. 92 (1989) 1. https://doi.org/10.1016/S0953-7562(89)80088-7
26. Clint G. M., Dighton J. Uptake and accumulation of radiocaesium by mycorrhizal and non-mycorrhizal heather plants. New Phytol. 121 (1992) 555. https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.1992.tb01125.x
27. Dighton J., Clint G. M., Poskitt J. Uptake and accumulation of 137Cs by grassland soil fungi: a potential pool of Cs immobilization. Mycol. Res. 95 (1991) 1052. https://doi.org/10.1016/S0953-7562(09)80545-5
28. Domsch K. H., Gams W., Anderson T. -H. Compendium of Soil Fungi. Vol. 1 (Lnd. etc.: Acad. Press, 1980) 839 p.
29. Ellis M. B. Dematiaceous Hyphomycetes (Commonwealth Mycol. Inst.: Kew, England, 1993) 608 p.
30. Joner E. J., Johansen A. Phosphstase activity of external hyphae of two arbuscular mycorrhizal fungi. Mycol. Res. 104 (2000) 81. https://doi.org/10.1017/S0953756299001240
31. Lodge D. J., Fischer P. J., Sutton B. C. Endophytic fungi of Manilkara bidentata leaves in Puerto Rico. Mycologia 88 (1996) 733. https://doi.org/10.2307/3760967
32. McCutcheon T. L., Carroll G. C. Genotypic Diversity in Populations of a Fungal Endophyte from Douglas Fir. Mycologia 85 (1993) 180. https://doi.org/10.2307/3760454
33. Noordijk H., van Bergeijk K. E., Lembrechts J., Frissel M. J. Impact of ageing and weather condition on soil-to-plant transfer of radiocaesium and radiostrontium. J. Environ. Radioactivity 15 (1992) 277. https://doi.org/10.1016/0265-931X(92)90063-Y
34. Pelaez F., Collado J., Arenal F. et al. Endophytic fungi from plants living on gypsum soils as a source of secondary metabolites with antimicrobial activity. Mycol. Res. 102 (1998) 755. https://doi.org/10.1017/S0953756297005662
35. Ramirez C. Manual and atlas of the Penicillia (Amsterdam, New York, Oxford: Elsevier Biomedical Press, 1982) 874 p.
36. Rifai M. A. A Revision of the Genus Trichoderma (Commonwealth Mycol. Inst.: Kew, England, 1969) 56 p.
37. Schulthess F. M., Faeth S. H. Distribution, abundances, and associations of the endophytic fungal community of Arizona fescue (Festuca arizonica). Mycologia 90 (1998) 569. https://doi.org/10.2307/3761215
38. Schulz B., Sucker J., Aust H. J. et al. Biologically active secondary metabolites of endophytic Pezicula species. Mycol. Res. 99 (1995) 1007. https://doi.org/10.1016/S0953-7562(09)80766-1
39. Stovall M. E., Clay K. Fungitoxic effects of Balansia cyperi. Mycologia 83 (1991) 288. https://doi.org/10.2307/3759988
40. Thom K. B., Fennell D. I. The Genus Aspergillus (Baltimore: Williams Wilkins Co., USA, 1965) 686 p.
41. Yates I. E., Hiett K. L., Kapczynski D. R. et al. GUS transformation of the maize fungal endophyte Fusarium moniliforme. Mycol. Res. 103 (1999) 129. https://doi.org/10.1017/S0953756298006911